Методичні рекомендації розроблення сортоспецифічних технологій розмноження нішевих культур (аронія, ірга та брусниця)
DOI: 10.35205/978-617-7594-85-6-2025-43-69
УДК 634.19: 578.53
Методичні рекомендації розроблення сортоспецифічних технологій розмноження нішевих культур (аронія, ірга та брусниця). Упорядники: Медведєва Т.В., Натальчук Т.А., Яремко Н.О., Удовиченко К.М.
Methodological Guidelines for the Development of Cultivar-Specific Propagation Technologies for Niche Crops (Chokeberry, Serviceberry, and Lingonberry). Editors: Medvedieva T.V., Natalchuk T.A., Yaremko N.O., Udovychenko K.M.
These methodological guidelines describe the stages of microclonal propagation technology for niche horticultural crops, including serviceberry, chokeberry, and lingonberry. Effective sterilization regimes for plant material are defined, and optimal nutrient media compositions for the initiation and proliferation stages are selected. The effects of nutrient media composition, cytokinins, and their concentrations on shoot formation capacity and explant development are evaluated.
The efficiency of different auxins and their concentrations on microshoot rooting is assessed, and suitable substrate compositions for effective plant acclimatization are selected.
The methodological guidelines may be used in specialized higher education institutions and research organizations.
| В книзі Біотехнологічні методи в
садівництві: збірник методичних
рекомендацій. Інститут садівництва НААН, 2025. 86 с. DOI: 10.35205/978-617-7594-85-6 ISBN-978-617-7594-85-6 |
 |
В рекомендаціях описані етапи технології мікроклонального розмноження нішевих культур – ірги, аронії та брусниці. Визна
чено ефективні режими стерилізації рослинного матеріалу, підібрано оптимальний склад живильного середовища для етапу введення та проліферації. Оцінено вплив живильних середовищ, цитокінінів та їх концентрацій на пагоноутворюючу здатність та розвиток експлантів. Вивчено ефективність використання різних ауксинів та їх концентрацій на укорінення мікропагонів та підібрано склад субстрату для ефективної адаптації.
Дані методичні рекомендації можуть використовуватись у профільних закладах вищої освіти та наукових установах
ЗМІСТ
Перелік умовних позначень та скорочень ......... 45Вступ ....... 46
1. Організація біотехнологічної лабораторії ....... 48
2. Живильні середовища ........ 50
3. Мікроклональне розмноження плодово-ягідних культур та адаптація до умов in vivo ........ 55
3.1. Мікроклональне розмноження ірги сорту Honeywood ........ 61
3.2. Мікроклональне розмноження аронії сорту Galicjanka ......... 63
3.3. Мікроклональне розмноження брусниці сорту Runo Bielawski .......... 64
1. Андрієнко М.В. Аронія чорноплідна на Україні. Київ. 1992. 104 с.
2. Державний реєстр сортів рослин, придатних для поширення в Україні. 2024. URL: https://minagro.gov.ua/file-storage/reyestr-sortiv-roslin
3. Колдар Л. А., Небиков М. В., Андрієнко О. Д. Індукція органогенезу у експлантів Amelanchier Ovalis Medic. in vitro. Автохтонні та інтродуковані рослини. 2015. № 11. С. 100-104.
4. Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. К.: Наук. Думка, 2005. 269 с.
5. Медведєва Т.В. Проблеми акліматизації культивованих in vitro рослин. Фізіологія і біохімія культурних рослин. 2008.
№ 40(4). С. 299−309.
6. Натальчук Т.А., Медведєва Т.В., Запольський Я.С. Особливості введення в культуру in vitro вишні сорту «Ксенія» та черешні сорту «Василиса прекрасна». Сортовивчення та охорона прав на сорти рослин, 2020. № 16(1). С. 97‒102. DOI: 10.21498/2518-1017.16.1.2020.201353
7. Яремко Н.О., Удовиченко К.М., Медведєва Т.В. Натальчук Т.А., Запольський Я.С. Мікроклональне розмноження брусниці (Vaccinium Vitis-idaea L.). Садівництво. 2022. Вип. 77. С. 100–107. DOI: 10.35205/0558-1125-2022-77-100-107
8. Adhikari D.P., Francis J.A., Schutzki R.E., Chandra A., Nair M.G. Quantification and characterisation of cyclo-oxygenase and lipid peroxidation inhibitory anthocyanins in fruits of Amelanchier. Phytochemical Analysis. 2005. Vol. 16. P. 175-180.
9. Ainsley P.J., Collins G., Sedgley M. In vitro rooting of almond (Prunus dulcis Mill.). In vitro сellular & developmental. Biologia plantarum, 2001. Vol. 37(6). P. 778−785.
10. Bayhan N., Yücesan B. The impact of sucrose and 6-benzylaminopurine on shoot propagation and vitrifcation in Aronia
melanocarpa (Black chokeberry). Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2024. Vol. 156(55). DOI: 10.1007/s11240-023-02652-x
11. Borowska S., Brzóska M.M. Chokeberries (Aronia melanocarpa) and their products as a possible means for the prevention and treatment of noncommunicable diseases and unfavorable health effects due to exposure to xenobiotics. Comprehensive
Reviews in Food Science and food safety. 2016. Vol. 15 (6). P. 982-1017.
12. Brandová P., Sedlák J., Paprštein F. Mikrorozmnožování jeřábu a aronie. Vědecké práce ovocnářské. 2019. Vol. 26. P. 29–36.
13. Сhiorean A., Smaranda R-M., Zsolt J-I., Moldovan C., Zagrai I., Cordea M. The response of two chokeberry cultivars to the influence of climatic factors in Bistrita area, Romania. Bulletin of University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Cluj-Napoca. Horticulture. 2023. № 80. P. 15–21. DOI: 10.15835/buasvmcn-hort:2023.0026
14. Clapa D., Fira A., Joshee N. An efficient ex vitro rooting and acclimatization method for horticultural plants using float hydroculture. Hortscience. 2013. Vol. 48(9). P. 1159.
15. Debnath S.C., Arigundam U. In vitro propagation strategies of medicinally important berry crop, lingonberry (Vaccinium vitis-idaea L.). Agronomy. 2020. Vol. 10. P. 744. DOI: 10.3390/agronomy10050744.
16. Dobránszki J., Mendler-Drienyovszki N. Cytokinin-induced changes in the chlorophyll content and fluorescence of in vitro apple leaves. Journal of Plant Physiology. 2014. Vol. 171 (16). P. 1472-8. DOI: 10.1016/j.jplph.2014.06.015
17. Driver J.A., Kuniyuki A.H. In vitro propagation of Paradox walnut rootstock. Hort Science. 1984. Vol. 19(4). P. 507-509.
18. Hunková J., Libiaková G., Fejér J., Gajdošová A. Improved Amelanchier alnifolia (nutt.) nutt. ex M. Roem. Shoot proliferation by manipulating iron source. Propagation of Ornamental Plants. 2017. Vol. 17( 3). P. 103-107.
19. Imrak B., Kafkas E., Tufan M. The investigation of the impact of different plant growth regulators on micropropagation of aronia (Aronia Melanocarpa. L). AGBIOL. 2021. P. 265.
20. Jaakola L., Tolvanen A., Laine K., Hohtola A. Effect of N6 isopentenyladenine concentration on growth initiation in vitro and rooting of bilberry and lingonberry microshoots. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2001. Vol. 66. P. 73–77.
21. Lee E.C.M., de Fossard R.A. Some factors affecting multiple bud formation of strawberry Fragaria x ananassa in vitro. Acta Horticulturae. 1977. Vol. 78. P. 187-195.
22. Lloyd G., McCown. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Int. Plant Prop. Soc. Proc. 1980. Vol. 30. P. 421.
23. Mazza G. Compositional and functional properties of Saskatoon berry and blueberry. Int J Fruit Sci. 2005. Vol. 5. P. 99-118.
24. Mihovilović A.B., Jerčić I.H., Prebeg T., Tomaz I., Pavičić A., Barić M., Kereša S. Light source and cytokinin type affect multiplication rate, chlorophyll content and stomata formation of Amelanchier alnifolia shoots in vitro. Journal of Central European Agriculture. 2020. Vol. 21(4). P. 826-838. DOI: https://doi.org/10.5513/JCEA01/21.4.2909
25. Moyo M., Aremu A.O., Plackovˇa L., Pl´ıhalova L., Pˇenˇcˇık A., Novak O., Holub J., Dolezal K., Staden J. Deciphering the growth pattern and phytohormonal content in Saskatoon berry (Amelanchier alnifolia) in response to in vitro cytokinin application. New Biotechnology. 2018. Vol. 42. P. 85-94. DOI: 10.1016/j.nbt.2018.02.001
26. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioas says with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 1962. Vol. 15. P.473-497.
27. Nacheva L.R., Ivanova V.S. Silver nitrate and chlorhexidine gluconate – effective surface sterilization agents in disinfection procedures at the initiation of woody shoot tip and embryoculture. J. BioSci. Biotech. 2017. № 6(3). Р. 187−190.
28. Nas Z. Anaçlık potansiyel gösteren 42-01 zerdali genotipinin in vıtro mikroçoğaltım özelliklerinin araştırılması, Selcuk University, Konya, 2021. P. 56.
29. Quoirin M., Lepoivre P. Іmproved media for in vitro culture of Рrunus sp. Acta Hortic. 1977. Vol. 78. P. 437‒442.
30. Şuţan N.A., Isac V., Duminică C., Popescu A. Studies on the in vitro micropropagation ability of Аronia Мelanocarpa (Мichx.) Elliot. Current Trends in Natural Sciences. 2017. Vol. 6(11). P. 85-92.
31. Trifunović-Momčilov M., Motyka V., Dragićević I.Č., Petrić M., Jevremović S., Malbeck J. et al. Endogenous phytohormones
in spontaneously regenerated Centaurium erythraea Rafn. plants grown in vitro. J Plant Growth Regul. 2016. Vol. 35. P. 543-352.
32. Yang F., Du B. In vitro proliferation of Saskatoon berry (Amelanchier alnifolia Nutt) is affected by plant growth regulators and their concentrations but less by carbon source. Indian J Biotechnol. 2018. Vol. 16. P. 648-654.
33. Zimmerman R.H., Broome O.C. Blueberry micropropagation. In Proceedings of the conference on nursery production of fruit
plants through tissue culture–applications and feasibility. Beltsville, MD, USA, April 21-22, 1980. P. 1080.
